Protocolo de muestreo y conservación de muestras de CO2 Material requerido Caja de transporte acondicionada para frascos de cristal (estilo CRM de CO2) con 20 botellas vacías. Cada botella debe llevar una identificación (ID) única, según una cinta de color y un número (del 1 al 20). Cada color corresponderá a una serie de 20 botellas. Tubos de muestreo de tygon o silicona (metidos en bolsa zip para evitar que se ensucien). Reactivo de HgCl2 , disolución saturada, para envenenar la muestra y eliminar toda la materia viva que conserva. De esta manera, conseguimos mantener la estabilidad del agua en el proceso de conservación. Papel de secar Vaselina de vacío o grasa apiezon, palitos de madera para manipularlas Cinta de electricista, o parafilm para cubir los tapones de los frascos muestrados. Material de trincado, bandeja y antideslizante. Bolsas de basura negras. Dosificador SOCOREX 1-10mL para añadir a cada muestra los 200mL de HgCl2. Guantes (el reactivo de HgCl2 es tóxico, deben usarse los guantes en el proceso de envenenamiento de la muestra). Cestas para el muestreo Estadillo de muestreo tal cual la muestra de abajo y lápiz con carpeta sólida para apoyar estadillo y tomar notas en la zona de muestreo de la roseta. Muestreo en la roseta Link a charla de A. Dickson sobre muestreo de variables de CO2  https://www.iaea.org/sites/default/files/18/07/oa-sampling-dickson-050916.pdf Link a video de A. Dickson. How to properly sample seawater for carbonate chemistry. https://www.youtube.com/watch?v=9QYic6fswf0 Orden del muestreo en la roseta si no hay trazadores (CFCs, SF6...) es: muestras de O2, después pH, DIC, Alcalinidad, nutrientes y salinidad. Cuando solo hay un frasco de CO2 se toma despues de oxígeno. Antes de tomar la muestra de CO2 se debe comprobar que la niskin no gotea antes de tocarla, si lo hace indicarlo en el estadillo de muestreo y comentarlo a los responsables de Oc. Física y los muestradores de oxígeno disuelto. Las bocas y respiradores de las botellas han de estar cerradas para evitar contaminación por agua de otras profundidades. Si el agua se escapa de la botella, es probable que el Niskin se contamine con agua de otras profundidades. Esto debe ser observado en el momento del muestreo. Preparación de la niskin antes del muestreo => abrir pitorro inferior de la niskin calcando, no debe salir agua si la rosca superior está cerrada. Si es así proceder a abrir la rosca superior y continuar con el muestreo. Las muestras de DIC deben tomarse libre de burbujas, para ello conectamos un tubo de muestreo a la Niskin y lo colocamos dentro de la botella. Abierta la rosca superior, calcar el pitorro y dejar que fluya el agua. Así se ceba el tubo de muestreo evitando que se formen burbujas y/o eliminándolas. El agua debe fluir suave. Llenar el frasco apoyando el tubo en el fondo mientras giramos el frasco con la otra mano (para lavarlo). Dejar rebosar agua aproximadamente 5 segundos. Aprovechar el agua que rebosa para enjuagar el tapón del frasco. Anotar en el estadillo: la estación, cast, botella Niskin y el número del frasco con su correspondiente color en el cual se toman las muestras. Así como cualquier incidencia (si la niskin gotea, vino abierta, etc…). Esto lo hace la persona de apoyo, no el muestreador. Finalizado el muestreo y previo a la fijación, colocar las muestras en zona oscura y a temperatura ambiente para que los frascos exuden. Si no hay armario o zona oscura, cubrir con bolsas de basura negras. Fijación de la muestra Colocar el dosificador de HgCl2 en la campana de gases y encenderla. Lleva los frascos de CO2 cerca de la campana de gases. Volver a secarlos. Tener a mano un cubo para vaciar ligeramente las muestras de dos en dos. Abrimos la botella y vaciamos una pequeña cantidad (necesitamos que el tapón con la grasa no se sumerja en el agua).                                               Con la ayuda del dosificador, añadimos los 200 µL de cloruro de mercurio en el frasco. La dosificaicón debe ir directa al agua, no a las paredes del frasco. No se agita ni se voltea. Secar el interior del cuello del frasco y el tapón. Al tapón añadirle la grasa (o vaselina)  con la ayuda de la espátula. Es aconsejable poner una pequeña cantidad en 3 zonas distintas (siempre de la mitad del tapón hacia arriba, no queremos que la grasa entre en contacto con la muestra), Colocar el tapón en el frasco y lo rotamos varias veces (de esta forma se expande la grasa por el cuello del frasco y evitamos problemas de atasco a la hora de abrirlo para su análisis). Finalmente colocamos la goma con su pinza, cinta aislante o bien parafilm para sellar el tapón e impedir que se levante (es importante que las muestras estén bien selladas e impedir que se equilibren con la atmósfera). Comprobar las IDs de la totalidad de las muestras y las notas del estadillo. Colocar las muestras en la caja de transporte. Otros vídeos del muestreo y conservación de la muestra Referencias básicas Manual for CO2 Best Practices Dickson, A.G., Sabine, C.L. and Christian, J.R. (Eds.) 2007. Guide to best practices for ocean CO2 measurements. PICES Special Publication 3, 191 pp. SOP 1 - Water sampling for the parameters of the oceanic carbon dioxide system